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    《肿瘤学》

    PP2药物抑制乳腺癌细胞侵袭与增殖的机制

    发表时间：2009-07-14  浏览次数：550次

    作者：张永涛    作者单位：430030 武汉，华中科技大学同济医学院附属同济医院妇产科

    【摘要】  目的 以PP2 [4Amino5(4ChloroPhenyl)7(tButyl) Pyrazolo [3,4d] Pyrimidine ] 药物（src激酶抑制剂）处理乳腺癌细胞，检测src激酶及Ecadherin蛋白表达水平的变化, 观察PP2对乳腺癌细胞增殖和侵袭能力的影响，并探讨其可能的机制。方法 PP2处理乳腺癌细胞MDAMB231, Western blot 检测src及其相关蛋白的表达； Boyden小室实验检测细胞侵袭能力； MTT检测细胞的增殖能力。结果 PP2处理MDAMB231细胞后, src表达水平明显降低, Ecadherin表达水平升高;细胞的增殖和侵袭能力均受到明显抑制，剂量越高抑制作用越明显(P＜0.05) 。结论 PP2通过提高细胞粘附分子Ecadherin的表达,从而抑制乳腺癌细胞MDAMB231的增殖和侵袭能力。

    【关键词】  PP2 侵袭 增殖 乳腺癌

      cadherins是一个介导细胞间紧密连接的细胞膜糖蛋白家族。Ecaherin是在上皮细胞膜表达的重要cadherin分子。Ecadherin的胞浆区域通过细胞质蛋白catenins与细胞骨架的肌动蛋白丝相连，调控细胞形态和运动。在转基因小鼠的研究中发现Ecadherin是细胞转移的抑制因子[1]， Ecadherin能降低癌细胞的转移能力。

        src是一种膜相关的无需受体的信号传导蛋白激酶，在各类细胞与细胞间的粘附分子接头中大量存在。在肝癌细胞中，Ecaherin的异常是被src诱导的[2]。另外，在胰腺癌中，活化src的过表达导致了Ecadherin表达下调，刺激细胞的增值和转移[3]。这些现象表明如果把src激酶表达抑制,就有可能使Ecaherin表达上调,降低恶性肿瘤的转移。因此，本研究用PP2药物处理恶性肿瘤细胞，然后检测Ecadherin表达水平变化及细胞侵袭和增殖能力变化。通过本研究寻找治疗肿瘤转移的新方法。

        1  材料和方法

        1.1  材料来源  （1）PP2（4Amino5(4ChloroPhenyl)7(tButyl) Pyrazolo [3,4d] Pyrimidine）购于sigma公司。（2）src激酶抗体、Ecadherin、βactin抗体购于北京中杉公司。

        1.2  细胞培养  MDAMB231细胞购自美国典型物收藏中心（ATCC），用含10％胎牛血清的DMEM培养基（GIBCO公司产品），在5％CO2、37℃、饱和湿度培养箱中培养。

        1.3  Western blot分析  以三去污细胞裂解液将细胞裂解，参照文献方法[4]提取蛋白。取80μg蛋白质样品进行SDSPAGE电泳、转膜、温封闭1h后，分别加入含0.05％Tween 20的TBS缓冲液（TBST）稀释的src IgG、Ecadherin IgG（1∶500）；4℃过夜， TBST漂洗3次，每次10min，加入相应的碱性磷酸酶标记的二抗（1∶500）；用NBT/BCIP/buffer(1∶1∶50)显色系统显色。计算条带的积分吸光度（IA），采用目的条带与βactin的IA值比值表示待测样品的含量。

        1.4  MTT试验检测增殖能力  将MDAMB231细胞制成细胞悬液，进行细胞记数。将1×104个细胞接种于96孔板，加含10％胎牛血清DMEM 200 μl，在37℃、 5％CO2的培养箱中培养过夜；第二天分别加入不含PP2的DMEM（对照）和含不同浓度的PP2的DMEM，每组设6组复孔，培养两天，弃去培养液，1mg/ml MTT溶液加入每孔，培养4h，弃去MTT溶液，每孔加入DMSO（二甲基亚砜）中止，振荡15min，于酶标仪上测定560nm波长的吸光度（A）值，计算抑制率（%）=(1－试验组A/对照组A)×100%，并绘制浓度抑制率曲线。

        1.5  Boyden小室体外侵袭实验检测侵袭指数  8μm孔径聚碳酸酯微孔滤膜（ISPI公司）上均匀平铺一层基底膜基质胶（B.D公司）120μg/cm2，37℃放置3h，向下室各孔加入NIH3T3细胞无血清培养上清，上室每孔分别加入2×105/ml的细胞悬液（不含血清），每组设6个复孔，常规培养10h；取出膜，拭去膜上层剩余细胞，甲醇固定，苏木精染色，高倍镜下计数膜背面穿膜细胞数，以穿膜细胞百分比反映细胞侵袭力。穿膜细胞百分比＝穿过基质胶覆盖微孔膜的细胞数/穿过无基质胶覆盖微孔膜的细胞数×100％。

        1.6  统计学处理  应用SPSS11.0对试验数据进行分析，行t检验，P＜0.05差异有统计学意义。

        2  结果

        2.1  Western blot检测src激酶、Ecadherin表达水平  MDAMB231细胞用不同浓度[无药物组（control）、1×10-5 mol/L、1×10-4 mol/L、1×10-3 mol/L]PP2处理48h后进行Western blot检测。结果显示细胞经PP2处理后Csrc蛋白表达水平明显降低，而Ecadherin表达水平明显升高，见图1。 2.2  PP2药物处理细胞后体外侵袭能力的检测  Boyden小室可以间接的反应癌细胞的侵袭转移能力，本实验用PP2药物处理48h后，以Boyden小室实验检测细胞侵袭转移能力的变化。不同浓度(1×10-5 mol/L、1×10-4 mol/L、1×10-3 mol/L)的PP2处理后的穿膜细胞数与无药物组（control）相比，组间比较差异有统计学意义，且药物浓度越高侵袭能力越弱（P＜0.05），见图2。

        图1  Western blot 检测src激酶、Ecadherin表达水平

        图2  Boyden小室实验检测MDAMB231细胞侵袭能力

        2.3  MTT检测增殖抑制率  结果显示，经不同浓度[无药物组（control）、1×10-6 mol/L、1×10-5 mol/L、1×10-4 mol/L 、1×10-3 mol/L 、1×10-2mol/L]PP2处理MDAMB231细胞两天后，PP2对MDAMB231细胞有明显抑制作用，药物的浓度抑制率曲线呈“S”形,符合Logistic曲线，见图3。采用综合法计算半数抑制率IC50，结果PP2作用于MDAMB231细胞48h的IC50值为0.00583mol/L。另外，高浓度药物组明显比低浓度药组抑制率高，说明PP2对细胞抑制效应具有剂量依赖性。

        图3  MTT检测PP2对MDAMB231细胞的增殖抑制率

        3  讨论

        src激酶在大多数恶性肿瘤组织中过表达，如：乳腺癌、肺癌、宫颈癌、皮肤癌、直肠癌、食管癌、胃癌等。有报道称，src在乳腺癌细胞系中的表达高达30%～40%[3]。在外界信号通过细胞表面受体传导入细胞内的过程中， src活化并磷酸化细胞内大量的酶作用底物，通过复杂的信号传导到Ecaherin，最终影响细胞间粘附能力。将src激酶作为一种新的抗肿瘤治疗的靶点，寻找抑制src激酶的表达和活性的药物已经成为一个新的研究热点。PP2作为src激酶抑制剂，迄今鲜见其对肿瘤细胞生物学特性的影响及机制的研究。因此，本研究通过PP2药物处理乳腺癌细胞MDAMB231，然后检测其增殖和转移能力的变化,从而阐明PP2药物对乳腺癌细胞增殖和转移中的抑制作用。

        PP2药物处理后，MDAMB231细胞src蛋白的表达水平明显降低，Ecadherin表达水平显著增高。Boyden小室体外侵袭试验结果表明，用PP2药物处理后的MDAMB231细胞侵袭能力降低，且药物浓度越高侵袭能力越弱。MTT试验（四唑盐比色试验）检测MDAMB231细胞的增殖情况，结果显示PP2明显抑制细胞的增值。

        Ecaherin是钙依赖的跨膜糖蛋白，广泛分布予各胚胎来源的上皮细胞[5]。异常的Ecaherin系统在良性肿瘤向恶性肿瘤转变中发挥重要作用，Ecaherin表达降低，细胞侵袭能力随之上升[6]。本研究结果表明PP2药物提高了Ecaherin表达，从而降低恶性肿瘤细胞的侵袭能力。

        综上所述，src蛋白激酶抑制剂PP2药物上调Ecadherin的表达水平,从而抑制乳腺癌细胞的侵袭和增殖能力。这些发现为寻找一种新的治疗恶性肿瘤的途径提供了可能。

     

    【参考文献】  ［1］ Masaki T, Igarashi K, Tokuda M. pp60csrc activation in lung adenocarcinoma[J]. Eur J Cancer，2003，39(10): 1447–1455.

    [2] Gend T, Sakamoto M, Ichida T, et al. Loss of cellcell contact is induced by integrinmediated cellsubstratum adhesion in highlymotile and highlymetastatic hepatocellular carcinoma cells[J]. Lab Investig，2000，80(3): 387394.

    [3] Menke A, Philippi C, Vogelmann R, et al. Downregulation of Ecadherin gene expression by collagen type I and type III in pancreatic cancer cell lines[J]. Cancer Res，2001，61(8): 3508 3517.

    [4] 汪家政，范 明.蛋白质技术手册[M]. 北京：科学出版社,2000.2023.

    [5] 刘鸣，汤春生，张水红，等.上皮钙粘附素/连环素复合体在上皮性卵巢肿瘤中的表达及临床意义[J].现代妇产科进展，2004，13(3)：181183.

    [6] Hirohashi S. Inactivation of the Ecadherinmediated cell adhesion system in human cancers[J]. Am J Pathol，1998， 153(2): 333339.