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    《神经内科》

    胶质瘤的基因治疗进展

    发表时间：2010-06-21  浏览次数：529次

    　　作者：罗军 作者单位：四川省宜宾市第二人民医院神经内科,四川 宜宾 644000

    　　【关键词】 颅内肿瘤;胶质瘤;基因治疗;靶向治疗;综述文献

    　　胶质瘤即神经上皮组织肿瘤，是最常见的颅内肿瘤。目前手术、放疗、化疗等常规治疗效果差，而随着基因技术的不断深入研究，如何能利用基因有效治疗胶质瘤成为研究热点, 其基因治疗的分子策略主要包括细胞周期调节、自杀基因疗法、免疫基因疗法、抑癌基因治疗、抗血管生成治疗、PKR途径等,靶向基因治疗主要由临床前概念已过渡到临床试验性治疗的靶点选择，主要包括PI3K/AKT/mTOR和Ras/MAPK/CDK/Rb为代表的受体酪氨酸激酶通路。而最有研究前景的是将尚处于研究阶段的基因治疗与传统化疗、放疗的结合[1]。本文就胶质瘤的基因治疗分子策略及靶向治疗进行综述。

    　　1 胶质瘤基因治疗的分子策略

    　　当前胶质瘤基因治疗的分子策略包括以下几点：细胞周期调节基因及凋亡基因;自杀基因;免疫调节基因;抑癌基因;血管生成抑制基因;PKR途径。以上各策略可相互联系,并相互联合。

    　　1.1 细胞周期调节基因及凋亡基因

    　　P53与E2F1作为2种非常重要的抑癌基因, 维持基因组的稳定, 激活细胞凋亡。两者所不同的是P53基因可调节细胞周期，其变异能明显降低恶性脑胶质瘤对化疗的敏感性, P53基因在脑胶质瘤的高突变率为脑胶质瘤的靶向性基因治疗提供了重要的基础[2]。与P53基因不同的是，E2F1是直接调控细胞周期[3]，其不良反应是它对正常细胞的毒性和潜在的致瘤性。

    　　1.2 自杀基因

    　　自杀基因治疗在胶质瘤的基因治疗中占有极为重要的地位。自杀基因(suicide gene)疗法是指将某些病毒的基因转导入肿瘤细胞，此基因编码的特异性酶类能将细胞无毒或毒性极低的药物前体在肿瘤细胞内代谢成细胞毒性产物，以达到杀死肿瘤细胞为目的。不少学者[4]通过研究发现， 只要少量的自杀基因转染的癌细胞与未转染的癌细胞按一定比例混合后共同培养，不仅转染的癌细胞被杀灭，二者相互接触后相邻的未转染的癌细胞也大量死亡，即“旁观者效应”。该效应可使仅部分肿瘤细胞转染了自杀基因的整个肿瘤均受到经自杀基因转化了的抗癌“药”的攻击而全部消退。至于旁观者效应发生的机理, 多数研究表明它与细胞间的缝隙连接和免疫效应细胞在肿瘤病灶中的浸润有关。(1)细胞毒性产物通过细胞间的缝隙连接进入邻近细胞。(2)被破坏的细胞释放毒性物质和凋亡小体进入周围微环境, 并被邻近细胞摄取。(3)自杀基因杀死的细胞释放细胞因子, 进一步吸引免疫细胞进入肿瘤, 介导抗肿瘤免疫反应。(4)导致血管内皮细胞死亡, 引起肿瘤细胞缺血坏死。在肿瘤细胞中旁观者效应的物质基础一缝隙连接数量较正常细胞缺乏, 利用环腺昔酸(cAMP)可以诱导缝隙连接形成或导入缝隙连接的亚单位连接素43(connexin 43)的cDNA, 从而大大加强旁观者效应[5]。临床上，意大利的Colombo等[5]用结合的IL2/HSV.tk基因疗法治疗再生的多形恶性胶质细胞瘤，他们向瘤内注射转录病毒载体引导细胞(PVPC)，然后静脉注射GCV，结果显示，实验组的患者的存活率提高。

    　　1.3 免疫调节基因

    　　免疫调节基因主要是通过基因重组技术来增强机体的抗肿瘤免疫功能达到治疗肿瘤的目的，这主要包括3个方面：(1)肿瘤抗原提呈功能的加强，如从临床患者的血液和手术切除标本中获取自身抗原提呈细胞，在体外经GMCSF等细胞因子作用下扩增，体外表达肿瘤抗原的DNA或mRNA，然后回输入患者体内;(2)细胞因子基因转导肿瘤细胞;如将一基因体外转导脑胶质瘤细胞, 体外培养扩增后接种于病人自身皮下, 可发现肿瘤病灶明显缩小, 颅内胶质瘤明显坏死。(3)B7共刺激分子基因导入肿瘤细胞[7]。Mukhecjee等[8]在靶向T11结构的一种蛋白质(aprotein known as T11 target structure，T11 )注射N乙基·N·亚硝基脲( ENU)诱导的免疫抑制大鼠后，观察外周和神经系统的改变以及脾，脑浸润淋巴细胞的细胞毒性活性变化，用流式细胞仪测定肿瘤细胞和小神经胶质细胞含量，发现T11TS不仅增加了凋亡细胞的数目，同时降低了分裂细胞数目，而脾和脑浸润细胞的细胞毒性也有显著增加。数据证实了TILTS对实验脑肿瘤的特殊细胞凋亡作用。

    　　1.4 抑癌基因治疗

    　　抑癌基因亦称为抗癌基因，是指正常细胞内存在的能抑制细胞转化和肿瘤发生的一类基因群。目前已分离克隆出20余种抑癌基因，而D53基因是与人类肿瘤相关性最高的抑癌基因，不少研究也证明肿瘤的生成会伴随p53的缺失。Michiue等[8]使用了基因突变的p53蛋白，将羧基末端的多赖氨酸残基用精氨酸取代的产物，转导人胶质瘤细胞，由于存在对Mdm2(鼠双微基因)介导的遍蛋白化耐受性，这种蛋白具有较强的转导调节活性，同时抑制胶质瘤细胞的增殖，表现了其在P53基因治疗方面的应用潜力。

    　　1.5 血管生成抑制基因

    　　固体肿瘤的生长及增殖，需要新生血管提供足够的血运。而胶质瘤自身能产生一些血管生长因子，促进血管内皮细胞的分裂增殖。因此抑制肿瘤血管形成成为冶疗肿瘤的另一策略。早在1971年Fdkamn首先发现肿瘤血管生成因子，并由此提出了对肿瘤血管调控因子及其作用环节进行干预，经抗血管生成途径治疗肿瘤的新方法。它的优势是：(1)抗肿瘤血管生成治疗不是直接攻击肿瘤细胞, 不会产生放疗和化疗所造成的肿瘤细胞遗传性状的不稳定和治疗后耐药性。(2)由于肿瘤部位的血管内皮细胞比肿瘤细胞遗传性状稳定, 而正常血管内皮细胞处于不分裂的状态, 故抗肿瘤血管生成治疗对其影响不大。(3)另外由于内皮细胞本身就浸泡在血液中, 药物到达血管比到达肿瘤要容易得多。这说明抗肿瘤血管生成治疗与传统治疗相比有内在的优势, 已成为一种重要辅助治疗方式。胶质瘤作为一种实体瘤, 抗肿瘤血管生成治疗也具有重要价值。

    　　1.6 PKR途径

    　　活化性双链RNA依赖性蛋白激酶(PKR)是一种生长抑制性蛋白, 通常它能使病毒感染的细胞活化, 并诱导其死亡[10]。

    　　2 靶向性基因治疗研究

    　　临床试验性治疗的靶点选择主要集中在PI3K/AKT/mTOR和Ras/MAPK/CDK/Rb为代表的受体酪氨酸激酶通路，并已开发出一系列靶向小分子药物和单克隆抗体，包括酪氨酸激酶抑制剂、血管生成抑制剂、整合素抑制剂等[11]。

    　　2.1 PβK/AKT/mTOR信号转导通路

    　　EGFR在大多数胶质瘤中过度表达，而在正常脑组织中则低表达。用反义EGFR cDNA转染C6胶质瘤细胞, 观察到内生性的及蛋白水平明显下降, 在荷瘤鼠试验中, 肿瘤的生长明显被抑制[12]。PβK/AKT/mTOR信号转导通路是EGFR下游作用的靶通路之一[13]。PβK/AKT/mTOR信号转导通路靶向治疗方案包括：(1) 以EGFR为抑制靶点，阻断经酪氨酸激酶级联反应介导的信号转导。EGFR小分子抑制剂包括：埃罗替尼(erlotinib)、吉非替尼(gefitinib)、拉帕替尼(1apatinib)，可以同时抑制血管内皮生长因子受体(vascular endothelial growth factor receptor，VEGFR)的AEE788;EGFR单克隆抗体：西妥昔单抗(cetuximab)为人/鼠嵌合的EGFR IgG抗体，通过在细胞外与EGFR结合，阻断配体如表皮生长因子(epithelial growth factor，EGF)和转化生长因子一仅(transforming growth factorα ， TGFα)与EGFR结合及经受体酪氨酸激酶介导的信号转导。(2)以m R为抑制靶点：小分子抑制剂包括：雷帕霉素(rapamyein又名西罗莫司，sirolimus)及其衍生物西罗莫司脂化物(temsirolimus)、依维莫司(everolimus)和Deforolimus(AP23573)等[11]。

    　　罗军.胶质瘤的基因治疗进展 2.2 Ras/MAPK/CDK/Rb信号转导通路

    　　Ras/MAPK/CDK/Rb信号转导通路也是酪氨酸激酶下游作用的靶通路。Ras蛋白是鸟苷酸结合蛋白家族成员，对三磷酸鸟苷(GTP)和二磷酸鸟苷(GDP)具有高度亲和力，并具有同源性GTP酶的活性，有“分子开关”的作用[14]。Ras/MAPK/CDK/Rb信号转导通路靶向治疗方案包括：(1) 以Ras蛋白为靶点，抑制Ras蛋白的法尼基化修饰，阻断Ras蛋白定位于细胞膜内侧。替吡法尼(tipifamib)和洛那法尼(1onafarnib)均是法尼基转移酶抑制剂。(2) 以Raf蛋白为抑制靶点，阻断Ras信号进入MAPK通路。索拉非尼(sorafenib)可以通过抑制Raf及其下游信号通路，直接抑制肿瘤生长;另外，索拉非尼也可抑制VEGFR和血小板源生长因子受体(plateletderived growth factor receptor， PDGFR)，阻断肿瘤新生血管的生成，间接抑制肿瘤生长[11，14]。

    　　【参考文献】

    　　1 封林森,马建华,胡卫星,等.逆转录病毒介导Fcy::Fur融合基因联合5-FC治疗胶质瘤的体内试验研究[J].实用临床医药杂志，2009，13(1)：3842.

    　　2 Lang F, Yung WK, Sawaya R, et al. Adenovirusmediated p53 gene therapy for human gliomas[J]. Neurosuegery,1999,45(5):10931104

    　　3 GomezManzano C, Fueyo J. Gene therapy for glimas: p53 and E2F1 proteins and the target of apoptosis[J]. Int J Mol Med,1999,9(1):8184.

    　　4 Robe PA, Princen F, Martin D, et al. Pharmacological modulation of the bystander effect in the herpes simplex virus thymidine kinase/ganciclovir gene therapy system: effect of dibutyryl adenosine3',5'cyclic monophosphate, alphaglycymhetinic acid, and cytosine arabinoside[J]. Biochem Pharmacol,2000,60(2):241249.

    　　5 Mearadji A， Breeman W, Hoiland L， et al.Somapasatatin receptor gene therapy col'libined with targeted therapy with radiolabel0d octreot/de：a newtreatment for liver metastases [J].Ann SL,2002，236(6)：722728.

    　　6 Colombo F， Barzon L， Franchin E， et al. Combined HSVTK/IL2 gene therapy in patients with recm'rent glioblastoma muhiforme： biological and clinical resuhs[J]. Cancer GeneTher，2005，12(10)：835848.

    　　7 Pamey IF, Hao C, Petruk KC. Glioma immunology and immunotherapy[J]. Neurosurgery,2000,46(4):778792

    　　8 Mukheljee J， Ghosh A， Sarkar P， et al. Immunothermpy with sLFA3 specifically induces apoptesis of braintuinor cels by augmenting intracranialimrllune statusal[J]. Anticancer Res，2005，25(4)：29052519.

    　　9 Michiue H， Tomizawa K， Matsushita M， et al. Ubiquitinatlonresistant D53 protein transducfion therapy fac ilitates an ti. cancer effect on the growth of human malignant olna cels[J]. FEBs Lett，2005，579(18)：39653969.

    　　10 Wu S, Kaufman RJ. A model for the doubleatranded RNA(dsRNA)dependentdimerization and activation of the dsRNAactivated protein kinase PKR[J]. J Biol Chem,1997,272(2):12911296.

    　　11 Jagannathan J， Prevedello DM， Dumont AS， et al. Cellular signaling molecules as therapeutic targets in glioblastoma muhiforme[J]. Neurosurg Focus，2006，20(4)：E8.

    　　12 Pu P, Liu X, Liu A, et al. Inhibitory effect of antisense cpidermal growth factor receptor RNA on the proliferation of rat C6 glioma cells in vitro and in vivo[J]. J Neuro,2000,92(1):132139.

    　　13 Cao Z， Liu LZ， Dixon DA ， et al. Insulinlike growth factorI induces cyclooxygenase2 expression via PI3K， MAPK and PKC signaling pathways in human ovarian cancer cells[J]. Cell Signal，2007，19(7)：15421553.

    　　14 Ren H， Yang BF， Rainov NG. Receptor tyrosine kinases as therapeutic targets in malignant glioma[J]. Rev Recent Clin Trials，2007，2(2)：87 101.