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    肠内免疫营养对创伤后大鼠肠屏障功能的影响

    发表时间:2012-08-21  浏览次数:691次

      作者:余利坚 徐亮 姚晖 魏仁志 綦晓龙  作者单位:1泸州市人民医院 肛肠科 (四川 泸州 646000)  2泸州医学院附属医院 胃肠外科  (四川 泸州 646000)

      【摘要】目的研究肠内免疫营养对创伤后大鼠肠道屏障功能的影响。方法: 将30只Wistar大鼠随机分为3组,即对照组、普通肠内营养组、肠内免疫营养组。行胃造瘘术后早期分别给予普通饲料、肠内营养剂、肠内免疫营养剂等,行肠内营养7 d,测量小肠黏膜形态和小肠黏膜IgA+、CD3+、CD4+和CD8+细胞数量。结果:小肠绒毛高度、肠腺隐窝深度、黏膜厚度以及绒毛表面积等相关的形态学参数测量值显示,肠内免疫组均优于对照组(P<0.05),与普通营养组相比差异无统计学意义 (P>0.05)。对照组和普通肠内营养组大鼠小肠黏膜IgA+、CD3+、CD4+和CD8+细胞数低于肠内免疫营养组 (P<0.05)。结论:肠内免疫营养能较好的改善术后大鼠的小肠机械屏障功能,促进小肠黏膜屏障功能的恢复,增强其肠道免疫功能。

      【关键词】 肠道营养•肠内免疫营养•大鼠,Wistar

      Effects of enteral immunonutrition on intestinal mucosal barrieral function of wound rats

      YU Li-jian1, XU Liang2, YAO Hui2, WEI Ren-zhi2, QI Xiao-long2

      1Department of General Surgery, Luzhou People’s Hospital (Luzhou 646000 , China)

      2Department of Gastrointestianal Surgery, The Affiliated Hospital of Luzhou Medical College(Luzhou 646000, China)

      【ABSTRACT】 Objective: To study effects of enteral immunonutrition on intestinal mucosa barrieral function in wound rats. Methods: 30 Wistar rats were randomly divided into three groups ,with ten rats in each group(ie.control group,enteral nutrition and enteral immunonutrition group). After the germ-free operation of gastrostomy, rats in each group of enteral nutrition were treated with thesocaloric and isonitrogenous nutritional formulas respectively for 7 days.The ileum membrane morphological parameters and the quantity of IgA+,CD3+,CD4+ and CD8+ cell (each HP) in the ileum membrane were detected.Results: The villous height, crypt depth, mucosal thickness and villous surface area of ileum were increased in EN and EIN compared with control group(P<0.05),but it is no significance between them(P>0.05). The quantity of IgA+,CD3+,CD4+ and CD8+ cell is increased in EIN compared with control and EN group. (P<0.05). Conclusion: enteral immunonutrition may improve intestine mechanical barrierl function , promote restoration of the rat small intestine mucous membrane barrier function, and improve intestine immune barrierl function.

      【KEY WORDS】 Enteral nutrition•Immunounutrition•Rat, Wistar

      实验表明,当肠道饥饿12~18 h,肠道黏膜结构功能下降,因此手术或创伤后立即给予肠内营养,可以增加肠黏膜的血流量,防止细菌移位[1]。观察重度感染、创伤等严重应激患者的临床情况发现,这类患者机体中存在不同的代谢改变,对营养物质的需求与代谢亦不相同,单纯维持氮平衡和补足热量是不够的。如果肠内给予一些免疫增强物质,以特定方式刺激免疫细胞,不仅能够增强免疫应答功能,维持正常、适度的免疫反应,调整细胞因子的产生与释放,减轻有害或过度炎症反应,还能保护肠屏障功能完整,减少细菌移位。这种方式称免疫增强型肠内营养。研究早期给予肠内免疫营养对手术或创伤后机体的影响,特别是肠道屏障功能的影响,有十分重要的意义。

      1 材料与方法

      1.1 实验动物和分组 选用健康清洁级8周龄左右Wistar大鼠30只,体质量190~270 g,雌雄各半,由泸州医学院动物科提供(动物质量合格证号为:川医动字第2401115,质量为一级)。按随机数字表法分为3组:对照组(Control)、普通肠内营养组(EN)和肠内免疫营养组(EIN),每组各10只。

      1.2 动物模型制作和处理 大鼠适应性喂养2 d后,经无菌手术构建Wistar大鼠胃造瘘模型,术后置于22℃~26℃、湿度40%~70%的安静、通风良好的环境中单笼饲养。除对照组给予正规大鼠专用饲料外,EN组、EIN组分别给予不同成分的肠内营养剂(等氮等热量),经胃造瘘管给予肠内营养液。EN组给予瑞素,EIN组给予瑞能。各组能量供应均为1 037 kJ/(kg•d)。于大鼠术后开始喂养,第1天注入全量的1/2,第2天注入全量的2/3,第3天开始注入全量,喂养7 d后处死大鼠,留取末段回肠标本进行检测。

      1.3 肠内营养液和检测试剂 瑞能(Supportan)和瑞素(Fresubin)均购于Fresenius Kabi-华瑞公司。两种营养剂成分见各自说明书。其中每100mL瑞能添加精氨酸0.625 g,使瑞能每100mL蛋白质由5.85 g增至6.475 g,热量由130 kcal增至132.75 kcal。

      小鼠抗大鼠CD3+、CD4+和CD8+抗体均购于Serotec公司,山羊抗大鼠IgAα重链特异性抗体购于Rockland公司,SP系列试剂盒和相关的二抗均购于北京中杉生物技术公司。

      1.4 检测指标和方法

      1.4.1 肠黏膜形态学观察 留取的末段回肠标本进行HE染色后,每只动物取5张不连续的切片,每张切片顺次取奇数视野观测10个小肠绒毛,并测量绒毛高度、肠腺隐窝深度、黏膜厚度以及绒毛表面积。

      1.4.2 肠黏膜免疫细胞数量检测 严格按照试剂盒说明对留取标本进行免疫组织化学染色后,每张切片观察不相邻的5个视野,计算每张切片平均每个高倍(×400)视野IgA+、CD3+、CD4+和CD8+的阳性细胞数。

      1.5 统计学处理 采用SPSS11.0统计软件包进行分析,计量资料以x±s表示,组间均数比较采用方差分析,P≤0.05为差异有统计学意义。

      2 结果

      30只大鼠中,EN组1只于术后6 h死亡,原因不详。EN组有1只、EIN组有2只大鼠因术后胃造瘘管脱出或堵塞而退出实验,其余26只大鼠完成实验。

      2.1 小肠黏膜形态学观察 各组大鼠小肠壁层次清楚,黏膜上皮结构完整,无明显充血和炎性细胞浸润(图1)。EN组和EIN组肠黏膜绒毛高而密集,其绒毛高度、腺隐窝深度、黏膜厚度和绒毛表面积均明显高于对照组(P<0.05),EN组和EIN组间比较差异无统计学意义(P>0.05,表1)。

      2.2 小肠黏膜免疫细胞数量的比较 IgA+、 CD3+、CD4+、CD8+细胞质呈均匀的棕黄色,细胞核呈深蓝色,绝大部分阳性细胞局限于黏膜层内(图2~5)。EIN组大鼠肠黏膜内免疫细胞数量多于对照组和EN组(P<0.05,表2),EN组大鼠肠黏膜内免疫细胞数量多于对照组(P<0.05,见表2)。

      3 讨论

      胃肠道是人体最重要的免疫器官之一,其完整的屏障功能对于维护健康状态有极其重要的意义。肠道屏障主要包括:黏膜屏障、化学屏障、免疫屏障和生物屏障等4部分。任何一部分受损,均可导致肠道屏障功能损害,导致细菌移位,增加相关并发症。

      肠上皮70%的营养供应来自肠腔内的直接吸收,如果缺乏肠内营养的吸收,肠黏膜将处于病理状态[2]。研究证实,肠道饥饿18~20 h肠上皮就开始萎缩和脱落[3]。术后大鼠机体处于应激状态,小肠黏膜受损,肠道通透性的增加,免疫功能受到抑制,各种炎症因子大量产生。精氨酸、短链脂肪酸等是肠道黏膜能量的重要来源,机体内这类物质需求量远大于产生量,如无外源补充,肠黏膜的结构和功能都将受到损害。普通的大鼠饲料无法提供相应的底物来维持氮平衡和蛋白质合成,导致肠道黏膜更新障碍,屏障作用也有所降低。本研究发现,EN组和EIN组大鼠的小肠绒毛高度、肠腺隐窝深度、黏膜厚度、绒毛表面积均优于对照组(P<0.05),表明肠内营养可以减少应激对大鼠肠道黏膜的损害,促进肠道黏膜更新和修复。而EIN组与EN组之间差异无统计学意义(P>0.05),表明所有肠内营养均能起到营养肠道上皮的作用。这一现象是否普遍存在,与肠内营养持续时间有无关联,尚不清楚。我们计划针对这些疑问,就肠内免疫营养对肠黏膜形态学的持续影响做进一步研究。

      淋巴细胞是免疫系统的主要成分,肠道拥有人体最大的黏膜相关淋巴样组织。肠道免疫屏障与肠黏膜中各种淋巴细胞构成的肠相关淋巴样组织(gut-associated lymphoid tissue,GALT)的免疫功能有关。其中T淋巴细胞亚群对于维护肠黏膜的免疫屏障发挥重要的作用[4]。肠道免疫系统中另一个起核心作用的物质是分泌型IgA,其相对分子质量为36 000,是肠道分泌物中含量最丰富的免疫球蛋白。肠黏膜IgA是肠道免疫的第一道防线,在预防细菌黏附和移位上发挥关键作用[5]。本研究发现,通过肠内营养,特别是肠内免疫营养,可以提高大鼠肠道黏膜IgA+、CD3+、CD4+、CD8+细胞的数量,促进应激大鼠肠道黏膜免疫屏障的恢复,提高了大鼠的免疫功能。本研究所用的肠内免疫营养制剂含有多种免疫营养成分,均能发挥提高肠道局部和机体的免疫功能的作用。体外实验证实,培养基中缺乏精氨酸时,细胞生长受抑制,外周血淋巴细胞转化率下降,细胞DNA、RNA和蛋白质合成减少,淋巴因子IL-2、可溶性IL-2受体、γ-IFN产生减少[6]。精氨酸作为多胺和一氧化氮(NO)的前体物质,能够促进细胞的增殖,使真皮细胞的细胞周期进入S期;精氨酸还是羟脯氨酸的前体物质,能够加速胶原合成和创面愈合。精氨酸能够促进自然杀伤细胞活性,激活外周血中的单核细胞,调节T淋巴细胞和巨噬细胞分泌细胞因子,对机体免疫系统起调控作用。精氨酸的代谢产物精胺、精咪是重要的淋巴细胞增殖的刺激物,能够促进淋巴细胞增殖,增强机体的免疫功能。ω-3多不饱和脂肪酸可以减少炎性介质PGE2的产生,降低IL-1、TNF等细胞因子的产生,调节机体细胞免疫功能、抑制炎症反应。RNA是细胞分裂增殖的重要底物,可能参与调节细胞免疫应答反应。核苷酸能诱导IL-1β、TNF-α、INF-γ的释放,增强循环T淋巴细胞的数目和功能,提高巨噬细胞活性,刺激NK细胞的细胞毒作用[7]。

      对创伤后大鼠的应用肠内免疫营养,能够保护肠道黏膜,改善肠道黏膜屏障功能;特定的免疫增强物质能够保护和改善肠道免疫屏障功能,最终提高免疫能力和手术耐受能力,促进肠道正常结构和功能的恢复。

      【参考文献】

      [1] 任成山.SIR和MODS的研究现状与展望[J].中国急救医学,1999,11:498-501.

      [2] Pscheidl E, Schywalsky M,Tschaikowsky K,et al. Fish oil-supplemented parenteral diets normalize splanchnic blood flow and improve killing of translocated bacteria in a low-dose endotoxin rat model[J]. Crit Care Med, 2000,28(5):1489-1496.

      [3] Kantsos H, Papadopoulos S, Perrea D,et al. Effects of nimodipine administration on small bowel mucosa under conditions of laparotomy and consequent 48-hour starvation in a rat model[J]. Ann Ital Chir, 2008,79(2):143-149.

      [4] McGhee JR, Mestecky J, Elson Co, et al. Regulation of IgA synthesis and immune response by T cell and interleukins[J]. J Clin Immunol, 1989,9(3):175-179.

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      [6] Popovic PJ, Zeh HJ 3rd, Ochoa JB. Arginine and immunity[J].J Nutr,2007,137(6Suppl 2):1681S.

      [7] 徐亮,姚晖,庞明辉,等.胃肠道恶性肿瘤围手术期肠内免疫营养的临床研究[J].中华现代外科学杂志, 2005,2(15):1355-1357.

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