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    《血液病学》

    高效液相色谱法测定兔血浆中黄芩苷的含量

    发表时间:2010-05-13  浏览次数:575次

      作者:蒋晪,王鹏娇, 张敏,高秀丽 作者单位:贵阳医学院 药学院, 贵州 贵阳 550004

      【摘要】目的: 建立测定兔血浆中黄芩苷的含量测定方法。方法: 用PEG400-2%偏磷酸沉淀血浆蛋白,离心后取上清液进行色谱分析。色谱柱为Diamosil-C18,流动相为乙腈-0.1%磷酸(25∶75,V/V),流速为1 ml/min,检测波长275 nm。结果: 黄芩苷的质量浓度在0.087 22~2.907 5 mg/L (r=0.989 9);低、中、高3个浓度的质量控制(QC)样品的相对回收率分别为96.3%、97.3%和96.6%。结论: 方法简便快速,适用于黄芩苷的血药浓度测定及药代动力学研究。

      【关键词】 黄芩甙; 色谱法,高压液相; 血浆; 免

      Determination of Baicalin Concentration in Rabbit Plasma by RP-HPLC

      JIANG Qian, WANG Pengjiao, ZHANG Min, GAO Xiuli

      School of Pharmocology, Guiyang Medical College, Guiyang 550004, Guizhou, China

      [Abstract] Objective: To establish a biopharmaceutical analytical method for the determination of baicalin in plasma by RP-HPLC. Methods: Rabbit plasma proteins were precipitated with PEG400-2%metaphosphoric acid and the supernatant liquid obtained from the serum by centrifuge was subjected to chromatographic analysis. The analytical column was Eclipse XDB-C18, and the mobile phase consisted of acetonitrile-0.1% phosphoric acid (25∶75, V/V) with a flow rate of 1ml/min. The detection wavelength was 275 nm. Results:The linear range of baicalin in rabbit plasma was 0.087 22~2.907 5 mg/L (r=0.989 9).Three relative recoveries of baicalin represented low, middle and high concentrations were 96.3%,97.3%and 96.6% respectively. Conclusion: This method is accurate, reliable and simple and is suitable for the pharmacokinetic study of blood concentration of baicalin.

      [Key words] baicalin; chromatography,high pressure liquid; plasma; rabbits

      黄芩为唇形科多年生草本植物黄芩的根,主要含有黄芩苷、黄芩素等多种黄酮类化合物[1]。黄芩苷作为黄芩的主要有效成分之一,属葡萄糖醛酸苷类,具有广泛的药理作用,除传统意义上的抗炎、抗变态、抗病毒以及解热和保肝作用外,近年来,黄芩苷新用途的开发与研究日渐深入[2]。黄芩苷具有清除氧自由基、减轻组织缺血再灌注损伤、促进细胞凋亡以及抗肿瘤等多方面的作用[3]。黄芩苷具有多种药理活性,在中药中的应用非常广泛,用量也特别的大,但相关报道其生物利用度较低[4]。因此,在传统种植、提取及含量测定研究的同时,建立黄芩苷的血药浓度测定方法,研究其体内代谢过程,具有十分重要的基础和临床意义。2007年4月对兔血浆中黄芩苷的含量测定方法进行了研究,并测定了灌胃后家兔体内黄芩苷浓度,同时对其进行了相应的药代动力学分析。

      1 仪器与试药

      Agilent1100系列高效液相色谱仪(四元泵、可变波长检测器、自动进样器、柱温箱、化学工作站B.01.01C版),TGL-16C离心机(上海安亭科学仪器厂);黄芩提取物(含黄芩苷90%,四川省玉鑫药业有限公司),黄芩苷对照品(中国药品生物制品检定所,批号110715-200514);乙腈、甲醇为色谱纯,其余试剂均为分析纯。实验用兔由贵阳医学院动物中心提供。

      2 方法与结果

      2.1 色谱条件

      色谱柱: Diamosil-C18 (250 mm×4.6 mm,5 μm),Phenomenex-C18保护柱(3 mm×4.6 mm,5 μm);流动相:乙腈-0.1%磷酸(25∶75,V/V);流速:1 ml/min;检测波长:275 nm;柱温:40 ℃;进样量:50 μl。

      2.2 血浆样本处理

      取待测血浆0.2 ml,加入PEG400 0.2 ml,2%的偏磷酸0.2 ml,涡旋混合30 s沉淀蛋白,高速离心(16 000 r/min)10 min,取上清液50 μl进样测定。

      2.3 检测

      限在2.1的色谱条件下,样品按上述方法操作,得黄芩苷的最低检测浓度为0.029 08 mg/L(S/N≥3)。

      2.4 方法专一性

      在2.1的色谱条件下,样品按上述方法操作,比较空白血浆,空白血浆加黄芩苷对照品、血浆样品,考察方法的专一性。结果见图1。

      2.5 标准曲线的绘制

      精密吸取空白血浆0.2 ml,分别加入标准系列的黄芩苷对照品溶液,按血浆样品的处理方法操作,制成相当于黄芩苷浓度为0.087 22 mg/L、0.145 4 mg/L、0.290 8 mg/L、0.581 5 mg/L、1.163 mg/L、2.907 5 mg/L的血浆溶液,进样50 μl测定。将黄芩苷峰面积(A)对浓度(C)进行回归,得直线回归方程为:A=60.952 37×C+3.982 52,r=0.998 9。由此可表明该方法在0.087~2.900 mg/L浓度线性关系良好。

      2.6 回收率试验

      取空白血浆200 μl,按“标准曲线”条件项下方法配成低、中、高3个质量浓度(分别为0.087 22 mg/L、0.290 8 mg/L、2.908 mg/L)的QC样品各3份, 按样品处理方法处理后进行测定,同时配制相同浓度的黄芩苷标准溶液进行测定。与血浆样品结果对比,得到低、中、高3个浓度的QC样品的相对回收率,分别为96.3%、97.3%和96.6%。

      2.7 精密度试验

      日内精密度:配制含黄芩苷浓度为0.087 22、0.290 8和2.908 mg/L的QC样品各3份,在同一天内进行样品的处理和测定,得3个浓度QC样品的RSD,分别为2.37%、1.04%和0.92%。日间精密度:按上法配制QC样品各3份,在3 d中进行相同的处理和测定,得3个浓度QC样品的RSD,分别为5.86%、3.92%和2.58%。

      2.8 稳定性试验

      上述样品于回收率试验后,放置于4 ℃冰箱,10 d后复测,色谱峰面积变化不大,可见血浆样品10 d内在4 ℃条件下稳定。

      2.9 血药浓度测定

      健康家兔3只,经灌胃予黄芩提取物90 mg/kg,给药后0.083、0.25、0.5、1.0、1.5、2.0、3.0、4.0、6.0、8.0、12.0 h定时静脉取血0.5 ml。分离血浆,取0.2 ml血浆按“血浆样品处理”条下操作,测定黄芩苷含量(见图2)。实验数据采用3P87药代动力学方程进行曲线拟合,权重因子为1/C2(C为血药浓度),所得药代动力学参数见表1。表1 黄芩苷的主要药代动力学参数(略)注:C为血药浓度,AUC为血药浓度曲线下面积

      3 讨论

      3.1 流动相溶剂的选择

      在0.4%磷酸-甲醇系统中,空白血浆的背景影响大于0.1%磷酸-乙腈的系统影响。同时以0.4%磷酸和0.1%磷酸对黄芩苷峰型的影响无明显区别,而0.1%磷酸-乙腈系统的pH值在5左右, 0.4%磷酸-乙腈pH值在3左右,用0.1%磷酸-乙腈系统更有益于色谱柱的保护,因此,选用0.1%磷酸-乙腈系统做为生物样品中黄芩苷分析的洗脱系统[5]。

      3.2 兔血浆中蛋白质的处理

      考虑到样品处理的简便、快速,首先选用蛋白质沉淀法,选取过甲醇、乙腈、丙酮、中性盐和加热沉淀法,均不能满足实验要求[6,7]。偏磷酸是一种酸性沉淀剂,其作用机制是使蛋白质分子的阳离子形成不溶性盐而沉淀。实验选取1%、2%、5%的偏磷酸做为蛋白质沉淀剂,比较后发现用偏磷酸沉淀蛋白,黄芩苷的峰型很好,理论塔板数较高,但样品的绝对回收率很低,且随着偏磷酸的浓度增高,绝对回收率逐渐降低。通过先加入PEG400再加入偏磷酸沉淀蛋白质的方法可改善黄芩苷的回收率,使其符合要求。4

      【参考文献】

      [1]马爱团,钟秀会,蒙立根.黄芩黄酮药理研究概况[J].中国兽医杂志,2006(42):39-40.

      [2]陈秀清,齐香君,何恩铭.中药黄芩研究新进展[J].食品与药品,2006(8):23-27.

      [3]高中红,黄开勋,许辉碧.黄芩黄酮对自由基的清除作用的ESR研究[J].华中理工大学学报,1999(27):97-99.

      [4]王玉英.黄芩苷的吸收及药动学研究进展[J].中草药,2005(9):44-45.

      [5]李再新,吴小红.HPLC法测定复方水杨酸酊双组分含量[J].实用临床医药杂志,2008(4):54-55.

      [6]任天池,曹春林.血浆中黄芩甙的HPLC测定方法[J].中国实验方剂学杂志,1998(4):4-6.

      [7]仇峰,何仲贵,程杉,等.RP-HPLC法测定兔血浆中黄芩苷含量[J].沈阳药科大学学报,2002(19):189-192.

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